# АСМ на стекле с глутаральдегидом показала оболочки живых бактерий с нанометровым разрешением

- Опубликовано: 2026-11-11 07:39 UTC
- Раздел: Наука › Приборы и эксперименты
- Теги: атомно-силовая микроскопия, визуализация живых бактерий, закрепление бактерий, стекло с глутаральдегидом, клеточная оболочка бактерий, внешняя мембрана, липополисахарид, О-антиген, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii
- Адрес: https://realtech.media/ru/news/rt-41bb80233bc23c4a6406309e_asm_na_stekle/

**Авторы описали обратимое ковалентное закрепление живых бактерий для атомно-силовой микроскопии. Клетки остаются жизнеспособными и растут, включая гладкий E. coli и Pseudomonas aeruginosa.**

![AFM on glutaraldehyde-coated glass images live bacterial envelopes at nanometer resolution across species](https://realtech.media/media/2026/11/31141d67e0571b64.png)
*Nature Communications*

В журнале Nature Communications описан способ закрепления живых бактерий на стекле для атомно-силовой микроскопии (АСМ). Он даёт изображения клеточной оболочки с нанометровым разрешением у нескольких видов и при разной ориентации клеток, включая полюса [1]. Метод использует покровные стёкла, функционализированные глутаральдегидом, для обратимого ковалентного прикрепления. По данным авторов, он сохраняет жизнеспособность клеток и их рост [1].

## Почему закрепление ограничивает АСМ

АСМ дала изображения нативных оболочек бактерий с самым высоким разрешением, но требует жёсткого закрепления клеток без их повреждения. Ранее применяли физический захват в сетках или канавках, химическое сцепление, гидрофобное прикрепление и электростатическую адгезию на желатине, поли-L-лизине, Cell-Tak или Vectabond [1]. Результаты у разных штаммов различались. Данных АСМ высокого разрешения по гладкому E. coli с полноразмерным О-антигеном не было, а АСМ живой Pseudomonas aeruginosa оказалась неудачной [1].

Авторы сравнили Vectabond (электростатическое прикрепление), глутаральдегид и лектины, связывающие сахара ЛПС. Гладкий E. coli K-12 MG1655, у которого О-антиген восстановили исправлением мутации wbbL, плохо адсорбировался на Vectabond [1]. Глутаральдегид на стекле образует основание Шиффа с первичными аминами лизинов на поверхности клетки, и эта связь обратима в присутствии воды [1]. Жизнеспособность оценивали по окраске SYTOX в комбинированной установке АСМ и флуоресцентной микроскопии. На покровном стекле с глутаральдегидом растущую клетку E. coli снимали в среде LB в течение 24 мин, а деление наблюдали на 27–33 мин [1].

## Что показали изображения

Авторы снимали E. coli как с О-антигеном, так и полностью без олигосахаридов ЛПС. Они сообщают, что контраст АСМ зависит от сложности ЛПС, а ранее наблюдавшиеся домены внешней мембраны представляют собой острова, обогащённые ЛПС [1].

Также сняты внешние мембраны Pseudomonas aeruginosa и Acinetobacter baumannii. В них нет характерных белковых тримеров, которые видны у модельного E. coli [1].

Авторы описывают и зависящие от фазы роста изменения на полюсах E. coli. Сети тримеров, типичные для клеток экспоненциальной фазы, не разрешались, и появлялись морфологические дефекты [1]. Все эксперименты выполнены на лабораторных культурах бактерий.

## Источники

1. [Nature Communications](https://doi.org/10.1038/s41467-026-78975-y)

---

Источник: RealTech, realtech.media — https://realtech.media/ru/news/rt-41bb80233bc23c4a6406309e_asm_na_stekle/